Paleontologia molecular

Paleontologia molecular é um campo de estudo interdisciplinar que visa aplicar técnicas moleculares ao material fóssil, a fim de recuperar, analisar e caracterizar "todas as biomoléculas [e.g., DNA, proteína, carboidrato e lipídio] ou seus produtos de degradação que podem ser rastreados até sua fonte e que podem lançar luz sobre a história diagenética molecular de um organismo”.[1][2] O objeto de estudo da Paleontologia molecular são os biomateriais não mineralizados, que podem ser definidos como "um conjunto de materiais biológicos que incluem os tecidos moles, células, moléculas orgânicas e/ou seus produtos de degradação, em nível de grupos funcionais úteis para rastreamento da molécula original, que não são tecidos originalmente biomineralizados (e.g., ossos e dentes) e, de alguma forma, não foram substituídos por minerais durante a fossildiagênese."[3]

O campo da paleontologia molecular tem fornecido informações importantes sobre eventos evolutivos, espécies diásporas, a descoberta e caracterização de espécies extintas. Em tempo mais recente, os avanços no campo da paleontologia molecular permitiram aos cientistas buscar questões evolutivas em um nível genético, em vez de confiar apenas na variação fenotípica. Aplicando técnicas de análise molecular ao DNA em restos de animais recentes, pode-se quantificar o nível de parentesco entre quaisquer dois organismos para os quais o DNA foi recuperado.[4] Usando várias técnicas biotecnológicas, como extração de DNA, amplificação e sequenciamento[5] os cientistas conseguiram obter novos insights sobre a divergência e a história evolutiva de inúmeros organismos extintos recentemente. Em fevereiro de 2021, os cientistas relataram, pela primeira vez, o sequenciamento de DNA de restos de animais, um mamute neste caso, com mais de um milhão anos, o DNA mais antigo sequenciado até hoje.[6][7]

Em tempo profundo, heterogeneidades composicionais em restos carbonáceos de uma diversidade de animais, variando em idade do Neoproterozóico ao Holoceno, têm sido associados a assinaturas biológicas codificadas em biomoléculas modernas por meio de uma cascata de reações de fossilização oxidativa.[8][9][10] A composição macromolecular de fósseis carbonáceos, alguns tonianos em idade,[11] preservam assinaturas biológicas refletindo na biomineralização original, tipos de tecido, metabolismo e afinidades de relacionamento (filogenético).

História editar

Diz-se que o estudo da paleontologia molecular começou com a descoberta por Abelson de aminoácidos de 360 milhões de anos preservados em conchas fósseis. um considerado o fundador do campo da paleontologia molecular.[12] Contudo, Svante Pääbo é frequentemente considerado o fundador do campo da paleontologia molecular.[13]

O campo da paleontologia molecular teve vários avanços importantes desde a década de 1950 e é um campo em crescimento contínuo. Abaixo está uma linha do tempo mostrando as contribuições notáveis que foram feitas.

Linha do tempo editar

 
Uma linha do tempo demonstrando datas importantes na paleontologia molecular. Todas essas datas estão listadas e especificamente fornecidas na seção História em Linha do tempo.[1][12][14][15][16][17][18][19][20][21][22][23]

meados da década de 1950: Abelson encontrou aminoácidos preservados em conchas fósseis que tinham cerca de 360 milhões de anos. Desenvolveu a ideia de comparar sequências de aminoácidos fósseis com organismos existentes para que a evolução molecular pudesse ser estudada.[12]

Anos de 1970: Peptídeos fósseis são estudados por análise de aminoácidos.[14] Começou-se a usar peptídeos inteiros e métodos imunológicos.[15]

Final dos anos 1970: Paleobotânicos estudaram moléculas de plantas fósseis bem preservadas.[16]

1984: O primeiro sequenciamento bem-sucedido de DNA de uma espécie extinta, o quagga, uma espécie parecida com a zebra.[1]

1991: Artigo publicado sobre a extração bem-sucedida de proteínas do osso fóssil de um dinossauro, especificamente o Seismosaurus.[17]

2005: Cientistas ressuscitam o extinto vírus da gripe de 1918.[18]

2006: Segmentos da sequência de DNA nuclear de Neandertais começam a ser analisados e publicados.[23]

2007: Cientistas sintetizam o extinto retrovírus humano endógeno (HERV-K) do zero.[19]

2010: Uma nova espécie de hominídeo primitivo, os Denisovanos, descoberto a partir de genomas mitocondriais e nucleares recuperados de ossos encontrados em uma caverna na Sibéria. A análise mostrou que o espécime denisovano viveu aproximadamente 41.000 anos atrás e compartilhou um ancestral comum com humanos modernos e neandertais há aproximadamente 1 milhão de anos na África.[20]

2013: O primeiro genoma neandertal completo é sequenciado com sucesso. Mais informações podem ser encontradas no projeto genoma Neanderthal.[21]

2013: Um espécime de 400.000 anos com DNA mitocondrial vestigial sequenciado é considerado um ancestral comum dos neandertais e denisovanos, Homo heidelbergensis.[22]

2015: Um dente fóssil de 110.000 anos contendo DNA de Denisovanos foi relatado.[24][25]

2018: Paleobiólogos moleculares ligam mecanisticamente os polímeros de composição N-, O-, S-heterociclo em restos fósseis carbonáceos a biomoléculas estruturais nos tecidos originais. Através da reticulação oxidativa, um processo semelhante a Reação de Maillard, resíduos de aminoácidos nucleofílicos condensam-se com espécies reativas de carbonila derivadas de lipídios e carboidratos.[8] Os processos de fossilização de biomoléculas, identificados por espectroscopia Raman de tecidos modernos e fósseis, modelagem experimental e avaliação de dados estatísticos, incluem glicosilação avançada e [[lipoxidação avançada] ].[8]

2019: Um laboratório independente de paleontólogos moleculares confirma a transformação de biomoléculas através de Glicosilação avançada e Lipoxidação durante a fossilização.[10] Os autores usam Síncrotron Espectroscopia no infravermelho por transformada de Fourier (FTIR).

2020: Wiemann e colegas identificam assinaturas biológicas refletindo biomineralização original, tipos de tecido, metabolismo e afinidade de relacionamento (filogenia) em heterogeneidades composicionais preservadas de uma diversidade de fósseis de animais carbonáceos.[9] Esta é a primeira grande análise de fósseis que variam em idade do Neoproterozóico ao Holoceno, e o primeiro registro publicado de sinais biológicos encontrados em matéria orgânica complexa.[9] Os autores confiam em análises estatísticas de um conjunto de dados de espectroscopia Raman excepcionalmente grande.

2021: Os geoquímicos encontram sinais de tipo de tecido na composição de fósseis carbonáceos que datam do Toniano,[11] e aplicam esses sinais para identificar epibiontes. Os autores usam espectroscopia Raman.

2022: Dados de espectroscopia Raman revelam que padrões na fossilização de biomoléculas estruturais foram replicados com Espectroscopia no infravermelho por transformada de Fourier (FTIR) e uma diversidade de diferentes instrumentos, filtros e fontes de excitação Raman.[26]

O quagga editar

 Ver artigo principal: quagga

O primeiro sequenciamento bem-sucedido de DNA de uma espécie extinta foi em 1984, a partir de um espécime de museu de 150 anos do quagga, uma espécie semelhante à zebra.[1] O DNA mitochondrial (também conhecido como mtDNA) foi sequenciado do músculo dessecado do quagga, e foi descoberto que difere em 12 substituições de bases do DNA mitocondrial de uma zebra da montanha. Concluiu-se que essas duas espécies tinham um ancestral comum há 3-4 milhões de anos, o que é consistente com as evidências fósseis conhecidas da espécie.[27]

Denisovanos editar

 Ver artigo principal: Denisovano

Os Denisovanos da Eurásia, uma espécie de hominídeo relacionada aos neandertais e aos humanos, foram descobertos como resultado direto do sequenciamento de DNA de um espécime de 41.000 anos recuperado em 2008. Análise do DNA mitocondrial de um osso de dedo recuperado mostrou que o espécime era geneticamente distinto tanto dos humanos quanto dos neandertais. Dois dentes e um osso do dedo do pé foram posteriormente encontrados como pertencentes a diferentes indivíduos com a mesma população. A análise sugere que tanto os neandertais quanto os denisovanos já estavam presentes em toda a Eurásia quando os humanos modernos chegaram.[21] Em novembro de 2015, cientistas relataram ter encontrado um dente fóssil contendo DNA de denisovanos e estimaram sua idade em 110.000 anos de idade.[24][25]

Análise de DNA mitocondrial editar

 
Trabalhando em uma sala limpa, os pesquisadores do Instituto Max Planck de Antropologia Evolutiva em Leipzig, na Alemanha, tomaram extensas precauções para evitar a contaminação de amostras de DNA neandertal - extraídas de ossos como este - com DNA de qualquer outra fonte, incluindo humanos modernos. Pesquisadores do NHGRI fazem parte da equipe internacional que sequenciou o genoma do neandertal, Homo neanderthalensis

O mtDNA do osso do dedo de Denisova difere daquele dos humanos modernos em 385 bases (nucleotídeos) na cadeia de mtDNA de aproximadamente 16.500, enquanto a diferença entre os humanos modernos e os neandertais é de cerca de 202 bases. Em contraste, a diferença entre chimpanzés e humanos modernos é de aproximadamente 1.462 pares de bases de mtDNA. O mtDNA de um dente apresentava alta semelhança com o do osso do dedo, indicando que eles pertenciam à mesma população.[28] De um segundo dente, foi recuperada uma sequência de mtDNA que mostrava um número inesperadamente grande de diferenças genéticas em comparação com a encontrada no outro dente e no dedo, sugerindo um alto grau de diversidade de mtDNA. Esses dois indivíduos da mesma caverna mostraram mais diversidade do que a vista entre os neandertais amostrados de toda a Eurásia e eram tão diferentes quanto os humanos modernos de diferentes continentes.[29]

Análise do genoma nuclear editar

O isolamento e o sequenciamento do DNA nuclear também foram realizados a partir do osso do dedo de Denisova. Este espécime mostrou um grau incomum de preservação do DNA e baixo nível de contaminação. Eles conseguiram um sequenciamento genômico quase completo, permitindo uma comparação detalhada com os neandertais e os humanos modernos. A partir dessa análise, eles concluíram que, apesar da aparente divergência de sua sequência mitocondrial, a população de Denisova, juntamente com o Neandertal, compartilhava um ramo comum da linhagem que leva aos humanos africanos modernos. O tempo médio estimado de divergência entre as sequências Denisovan e Neandertal é de 640.000 anos atrás, e o tempo entre ambas e as sequências dos africanos modernos é de 804.000 anos atrás. Eles sugerem que a divergência do mtDNA de Denisova resulta da persistência de uma linhagem expurgada de outros ramos da humanidade por deriva genética ou então uma introgressão de uma linhagem hominina mais antiga.[28]

Homo heidelbergensis editar

 Ver artigo principal: Homo heidelbergensis
 
"O crânio 5 do Homo heidelbergensis é uma das descobertas mais importantes na Sima de los Huesos, Atapuerca (Espanha). A mandíbula deste crânio apareceu, quase intacta, alguns anos após seu achado, próximo ao mesmo local.

O Homo heidelbergensis foi descoberto pela primeira vez em 1907 perto de Heidelberg, Alemanha e mais tarde também encontrado em outras partes da Europa, África e Ásia.[30][31] No entanto, não foi até 2013 que um espécime com DNA recuperável foi encontrado, em um fêmur de ~ 400.000 anos encontrado na Caverna Sima de los Huesos na Espanha. Verificou-se que o fêmur continha mtDNA e DNA nuclear. Melhorias na extração de DNA e técnicas de preparação de biblioteca permitiram que o mtDNA fosse isolado e sequenciado com sucesso, no entanto, o DNA nuclear foi encontrado muito degradado no espécime observado e também foi contaminado com DNA de um antigo urso das cavernas (Ursus deningeri) presente na caverna.[32] A análise do mtDNA encontrou uma ligação surpreendente entre o espécime e os denisovanos, e essa descoberta levantou muitas questões. Vários cenários foram propostos em um artigo de janeiro de 2014 intitulado "A mitocondrial genoma sequence of a hominin from Sima de los Huesos", elucidando a falta de convergência na comunidade científica sobre como Homo heidelbergensis está relacionado a outros grupos de hominídeos conhecidos. Um cenário plausível que os autores propuseram foi que o H. heidelbergensis foi um ancestral tanto dos denisovanos quanto dos neandertais.[32] Genomas nucleares completamente sequenciados de Denisovanos e Neandertais sugerem um ancestral comum há aproximadamente 700.000 anos, e um dos principais pesquisadores da área, Svante Paabo, sugere que talvez esse novo grupo de hominídeos seja aquele ancestral primitivo.[22]

Aplicações editar

Descoberta e caracterização de novas espécies editar

Técnicas de paleontologia molecular aplicadas a fósseis têm contribuído para a descoberta e caracterização de várias novas espécies, incluindo os denisovanos e Homo heidelbergensis. Conseguimos entender melhor o caminho que os humanos seguiram ao povoar a Terra e quais espécies estavam presentes durante essa diáspora.

Desextinção editar

 
O Íbex dos Pirineus foi temporariamente trazido de volta da extinção em 1984.
 Ver artigo principal: de-extinção

Agora é possível reviver espécies extintas usando técnicas de paleontologia molecular. Isso foi feito pela primeira vez por clonagem em 2003 com o Íbex dos Pirineus, um tipo de cabra selvagem que foi extinto em 2000. Núcleos das células do íbex dos Pirineus foram injetados em ovos de cabra esvaziados de seu próprio DNA e implantado em mães de cabra substitutas.[33] A prole viveu apenas sete minutos após o nascimento, devido a defeitos nos pulmões. Observou-se que outros animais clonados têm defeitos pulmonares semelhantes.[34]

Existem muitas espécies que foram extintas como resultado direto da atividade humana. Alguns exemplos incluem o dodô, o Arau-gigante, o tigre da Tasmânia, o golfinho chinês e o pombo-passageiro. Uma espécie extinta pode ser revivida usando substituição alélica[35] de uma espécie intimamente relacionada que ainda está viva. Tendo apenas que substituir alguns genes dentro de um organismo, em vez de ter que construir o genoma da espécie extinta a partir do zero; há a possibilidade de trazer de volta várias espécies dessa maneira.

A ética em torno da reintrodução de espécies extintas é muito controversa. Os críticos de trazer espécies extintas de volta à vida afirmam que isso desviaria dinheiro e recursos limitados da proteção dos problemas atuais de biodiversidade do mundo.[36] Com taxas de extinção atuais aproximadas de 100 a 1.000 vezes a taxa de extinção de fundo,[37] teme-se que um programa de desextinção possa diminuir as preocupações públicas sobre a atual crise de extinção em massa, se acreditar que essas espécies podem simplesmente ser trazidas de volta à vida. Como os editores de um artigo da Scientific American sobre desextinção colocam: "Devemos trazer de volta o mamute lanoso apenas para deixar os elefantes se extinguirem nesse meio tempo?"[36] O principal fator determinante para a extinção da maioria das espécies nesta era (pós 10.000 aC) é a perda de habitat, e trazer temporariamente de volta uma espécie extinta não recriará o ambiente que uma vez habitou.[38]

Os defensores da extinção, como George Church, falam de muitos benefícios potenciais. A reintrodução de uma espécie-chave extinta, como o mamute lanoso, pode ajudar a reequilibrar os ecossistemas que antes dependiam deles. Algumas espécies extintas poderiam criar amplos benefícios para os ambientes que já habitaram, se fossem devolvidas. Por exemplo, os mamutes lanudos podem retardar o derretimento da tundra russa e ártica de várias maneiras, como comer grama morta para que a grama nova possa crescer e criar raízes e periodicamente quebrar a neve, sujeitando o solo abaixo ao ar ártico. Essas técnicas também podem ser usadas para reintroduzir a diversidade genética em uma espécie ameaçada ou até mesmo introduzir novos genes e características para permitir que os animais compitam melhor em um ambiente em mudança.[39]

Pesquisa e tecnologia editar

Quando um novo espécime em potencial é encontrado, os cientistas normalmente primeiro analisam a preservação de células e tecidos usando técnicas histológicas e testam as condições para a capacidade de sobrevivência do DNA. Eles então tentarão isolar uma amostra de DNA usando a técnica descrita abaixo e conduzirão uma amplificação por PCR do DNA para aumentar a quantidade de DNA disponível para teste. Este DNA amplificado é então sequenciado. É tomado cuidado para verificar se a sequência corresponde às características filogenéticas do organismo.[1] Quando um organismo morre, uma técnica chamada datação de aminoácidos pode ser usada para datar o organismo. Ele inspeciona o grau de racemização de ácido aspártico, leucina e alanina dentro do tecido. Com o passar do tempo, a proporção D/L (onde "D" e "L" são imagens espelhadas uma da outra) aumenta de 0 para 1.[40] Em amostras onde a proporção D/L de ácido aspártico é maior que 0,08, sequências antigas de DNA não podem ser recuperadas (a partir de 1996).[41]

DNA mitocondrial vs. DNA nuclear editar

 
Ao contrário do DNA nuclear (à esquerda), o DNA mitocondrial é herdado apenas da linhagem materna (à direita).

DNA mitocondrial (mtDNA) é separado do DNA nuclear. Está presente nas organelas chamadas mitocôndrias em cada célula. Ao contrário do DNA nuclear, que é herdado de ambos os pais e reorganizado a cada geração, uma cópia exata do DNA mitocondrial é transmitida da mãe para seus filhos e filhas. Os benefícios de realizar a análise de DNA com DNA mitocondrial é que ele tem uma taxa de mutação muito menor do que o DNA nuclear, tornando o rastreamento de linhagens na escala de dezenas de milhares de anos muito mais fácil. Conhecendo a taxa de mutação básica do mtDNA,[42] (em humanos, essa taxa também é conhecida como Relógio molecular mitocondrial humano) pode-se determinar a quantidade de tempo em que duas linhagens estão separadas. Outra vantagem do mtDNA é que existem milhares de cópias dele em cada célula, enquanto apenas duas cópias de DNA nuclear existem em cada célula.[43] All eukaryotes, a group which includes all plants, animals, and fungi, have mtDNA.[44] Uma desvantagem do mtDNA é que apenas a linhagem materna é representada. Por exemplo, uma criança herdará 1/8 de seu DNA de cada um de seus oito bisavós, porém herdará um clone exato do mtDNA de sua bisavó materna. Isso é análogo a uma criança que herda apenas o sobrenome de seu bisavô paterno, e não uma mistura de todos os oito sobrenomes.

Isolamento editar

Há muitas coisas a serem consideradas ao isolar uma substância. Primeiro, dependendo do que é e onde está localizado, existem protocolos que devem ser realizados para evitar a contaminação e posterior degradação da amostra.[5] Em seguida, o manuseio dos materiais é geralmente feito em uma área de trabalho fisicamente isolada e sob condições específicas (ou seja, temperatura específica, umidade, etc...) também para evitar contaminação e perda adicional de amostra.[45]

Uma vez obtido o material, dependendo do que seja, existem diferentes maneiras de isolá-lo e purificá-lo. A extração de DNA de fósseis é uma das práticas mais populares e existem diferentes etapas que podem ser seguidas para obter a amostra desejada.[45] O DNA extraído de fósseis pode ser retirado de pequenas amostras e misturados com diferentes substâncias, centrifugado, incubado e centrifugado novamente.[46] Por outro lado, a extração de DNA de insetos pode ser feita moendo a amostra, misturando-a com tampão e passando por purificação através de colunas de fibra de vidro.[47] No final, independentemente de como a amostra foi isolada para esses fósseis, o DNA isolado deve ser capaz de sofrer amplificação.[5][46][47]

Amplificação editar

 
Reação em cadeia da polimerase

O campo da paleontologia molecular se beneficiou muito com a invenção da reação em cadeia da polimerase (PCR), que permite fazer bilhões de cópias de um fragmento de DNA de apenas uma única cópia preservada do DNA. Um dos maiores desafios até este ponto foi a extrema escassez de DNA recuperado por causa da degradação do DNA ao longo do tempo.[1]

Sequenciamento editar

O Sequenciamento de DNA é feito para determinar a ordem de nucleotídeos e genes.[45] Existem muitos materiais diferentes dos quais o DNA pode ser extraído. Em animais, o cromossomo mitocondrial pode ser usado para estudo molecular. Cloroplastos podem ser estudados em plantas como uma fonte primária de dados sequenciais.[45]

 
Uma árvore evolutiva de mamíferos

No final, as sequências geradas são usadas para construir árvores evolutivas.[45] Os métodos para combinar conjuntos de dados incluem: probabilidade máxima, evolução mínima (também conhecido como junção de vizinho) que procura a árvore com menor comprimento total, e o método de máxima parcimônia que encontra a árvore que requer o menor número de mudanças de estado de caráter.[45] The groups of species defined within a tree can also be later evaluated by statistical tests, such as the bootstrap method, to see if they are indeed significant.[45]

Limitações e desafios editar

As condições ambientais ideais para preservar o DNA onde o organismo foi dessecado e descoberto são difíceis de obter, bem como manter sua condição até a análise. O DNA nuclear normalmente se degrada rapidamente após a morte por processos hidrolíticos endógenos,[41] por radiação UV,[1] e outros estressores ambientais.

Além disso, descobriu-se que as interações com os produtos de decomposição orgânica do solo circundante ajudam a preservar materiais biomoleculares.[48] No entanto, eles também criaram o desafio adicional de poder separar os vários componentes para poder conduzir a análise adequada sobre eles.[49] Algumas dessas avarias também interferem na ação de algumas das enzimas usadas durante a PCR.[48]

Finalmente, um dos maiores desafios na extração de DNA antigo, particularmente no DNA humano antigo, está na contaminação durante a PCR. Pequenas quantidades de DNA humano podem contaminar os reagentes usados para extração e PCR de DNA antigo. Esses problemas podem ser superados com um cuidado rigoroso no manuseio de todas as soluções, bem como das vidrarias e demais ferramentas utilizadas no processo. Também pode ajudar se apenas uma pessoa realizar as extrações, para minimizar os diferentes tipos de DNA presentes.[41]

Referências

  1. a b c d e f g Schweitzer, Mary (10 de junho de 2003). «Reviews and Previews: The Future of Molecular Biology» (PDF). Palaeontologia Electronica. 5 (1): 1. Consultado em 9 de abril de 2023 
  2. Schweitzer MH (abril de 2004). «Molecular paleontology: some current advances and problems». Annales de Paléontologie. 90 (2): 81–102. doi:10.1016/j.annpal.2004.02.001. Consultado em 22 de abril de 2014 
  3. Alves, Everton Fernando; Machado, Márcio Fraiberg (26 de abril de 2021). «Proposta de Plano de Aula sobre Paleontologia Molecular para inserção em disciplina de Paleontologia de cursos de graduação em Ciências Biológicas». Pesquisa e Ensino em Ciências Exatas e da Natureza. 5: e1695. ISSN 2526-8236. doi:10.29215/pecen.v5i0.1695. Consultado em 9 de abril de 2023 
  4. Shapiro B, Hofreiter M (janeiro de 2014). «A paleogenomic perspective on evolution and gene function: new insights from ancient DNA». Science. 343 (6169). 1236573 páginas. PMID 24458647. doi:10.1126/science.1236573 
  5. a b c Waggoner B (2001). «Molecular Palaeontology» (PDF). Nature Publishing Group. Encyclopedia of Life Sciences: 1–5 
  6. Hunt K (17 de fevereiro de 2021). «World's oldest DNA sequenced from a mammoth that lived more than a million years ago». CNN News. Consultado em 17 de fevereiro de 2021 
  7. Callaway E (fevereiro de 2021). «Million-year-old mammoth genomes shatter record for oldest ancient DNA». Nature. 590 (7847): 537–538. Bibcode:2021Natur.590..537C. PMID 33597786. doi:10.1038/d41586-021-00436-x  
  8. a b c Wiemann J, Fabbri M, Yang TR, Stein K, Sander PM, Norell MA, Briggs DE (novembro de 2018). «Fossilization transforms vertebrate hard tissue proteins into N-heterocyclic polymers». Nature Communications. 9 (1). 4741 páginas. Bibcode:2018NatCo...9.4741W. PMC 6226439 . PMID 30413693. doi:10.1038/s41467-018-07013-3 
  9. a b c Wiemann J, Crawford JM, Briggs DE (julho de 2020). «Phylogenetic and physiological signals in metazoan fossil biomolecules». Science Advances. 6 (28): eaba6883. Bibcode:2020SciA....6.6883W. PMC 7439315 . PMID 32832604. doi:10.1126/sciadv.aba6883 
  10. a b Boatman EM, Goodwin MB, Holman HN, Fakra S, Zheng W, Gronsky R, Schweitzer MH (outubro de 2019). «Mechanisms of soft tissue and protein preservation in Tyrannosaurus rex». Scientific Reports. 9 (1). 15678 páginas. Bibcode:2019NatSR...915678B. PMC 6821828 . PMID 31666554. doi:10.1038/s41598-019-51680-1 
  11. a b Tang Q, Pang K, Li G, Chen L, Yuan X, Xiao S (setembro de 2021). «One-billion-year-old epibionts highlight symbiotic ecological interactions in early eukaryote evolution». Gondwana Research (em inglês). 97: 22–33. Bibcode:2021GondR..97...22T. ISSN 1342-937X. doi:10.1016/j.gr.2021.05.008 
  12. a b c Abelson PH (1954). «Organic constituents of fossils». Carnegie Institute of Washington Yearbook. 53: 97–101 
  13. Hreha S. «2013 Gruber Genetics Prize Press Release». Gruber Foundation 
  14. a b de Jong EW, Westbroek P, Westbroek JW, Bruning JW (novembro de 1974). «Preservation of antigenic properties of macromolecules over 70 Myr». Nature. 252 (5478): 63–64. Bibcode:1974Natur.252...63D. PMID 4139661. doi:10.1038/252063a0 
  15. a b Westbroek P, van der Meide PH, van der Wey-Kloppers JS, van der Sluis RJ, de Leeuw JW, de Jong EW (1979). «Fossil macromolecules from cephalopod shells: Characterization, immunological response and diagenesis». Paleobiology. 5 (2): 151–167. doi:10.1017/S0094837300006448 
  16. a b Nitecki MH (1982). Biochemical Aspects of Evolutionary Biology. Chicago: University of Chicago Press. pp. 29–91 
  17. a b Gurley LR, Valdez JG, Spall WD, Smith BF, Gillette DD (fevereiro de 1991). «Proteins in the fossil bone of the dinosaur, Seismosaurus». Journal of Protein Chemistry. 10 (1): 75–90. PMID 2054066. doi:10.1007/BF01024658 
  18. a b Kaiser J (outubro de 2005). «Virology. Resurrected influenza virus yields secrets of deadly 1918 pandemic». Science. 310 (5745): 28–29. PMID 16210501. doi:10.1126/science.310.5745.28 
  19. a b Rockefeller University (1 de março de 2007). «Ancient Retrovirus Is Resurrected». Science Daily. Consultado em 9 de abril de 2014 
  20. a b Krause J, Fu Q, Good JM, Viola B, Shunkov MV, Derevianko AP, Pääbo S (abril de 2010). «The complete mitochondrial DNA genome of an unknown hominin from southern Siberia». Nature. 464 (7290): 894–897. Bibcode:2010Natur.464..894K. PMID 20336068. doi:10.1038/nature08976  
  21. a b c Prüfer K, Racimo F, Patterson N, Jay F, Sankararaman S, Sawyer S, et al. (janeiro de 2014). «The complete genome sequence of a Neanderthal from the Altai Mountains». Nature. 505 (7481): 43–49. Bibcode:2014Natur.505...43P. PMC 4031459 . PMID 24352235. doi:10.1038/nature12886 
  22. a b c Callaway E (dezembro de 2013). «Hominin DNA baffles experts». Nature. 504 (7478): 16–17. Bibcode:2013Natur.504...16C. PMID 24305130. doi:10.1038/504016a  
  23. a b Dalton R (maio de 2006). «Neanderthal DNA yields to genome foray». Nature. 441 (7091): 260–261. Bibcode:2006Natur.441..260D. PMID 16710377. doi:10.1038/441260b  
  24. a b Zimmer C (16 de novembro de 2015). «In a Tooth, DNA From Some Very Old Cousins, the Denisovans». New York Times. Consultado em 16 de novembro de 2015 
  25. a b Sawyer S, Renaud G, Viola B, Hublin JJ, Gansauge MT, Shunkov MV, et al. (dezembro de 2015). «Nuclear and mitochondrial DNA sequences from two Denisovan individuals». Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (51): 15696–15700. Bibcode:2015PNAS..11215696S. PMC 4697428 . PMID 26630009. doi:10.1073/pnas.1519905112  
  26. Wiemann J, Briggs DE (janeiro de 2022). «Raman spectroscopy is a powerful tool in molecular paleobiology: An analytical response to Alleon et al. ( doi.org/10.1002/bies.202000295)». BioEssays. 44 (2): e2100070. PMID 34993976. doi:10.1002/bies.202100070 
  27. Higuchi R, Bowman B, Freiberger M, Ryder OA, Wilson AC (15 de novembro de 1984). «Sequências de DNA do quagga, um membro extinto da família dos cavalos». 312: 282–284. Bibcode:1984Natur.312..282H. PMID 6504142. doi:10.1038/312282a0  Parâmetro desconhecido |questão= ignorado (ajuda); Parâmetro desconhecido |diário= ignorado (ajuda)
  28. a b Reich D, Green RE, Kircher M, Krause J, Patterson N, Durand EY, Viola B, Briggs AW, Stenzel U, Johnson PL, Maricic T, Good JM, Marques-Bonet T, Alkan C, Fu Q, Mallick S, Li H, Meyer M, Eichler EE, Stoneking M, Richards M, Talamo S, Shunkov MV, Derevianko AP, Hublin JJ, Kelso J, Slatkin M, Pääbo S (dezembro de 2010). «História genética de um grupo arcaico de hominídeos da Caverna Denisova na Sibéria». 468: 1053–1060. Bibcode:2010Natur.468.1053R. PMC 4306417 . PMID 21179161. doi:10.1038/nature09710  Parâmetro desconhecido |autores de exibição= ignorado (ajuda); Parâmetro desconhecido |questão= ignorado (ajuda); Parâmetro desconhecido |diário= ignorado (ajuda)
  29. Pennisi E (maio de 2013). «Evolução humana. Mais genomas da Caverna Denisova mostram mistura de grupos humanos primitivos». Ciência. 340. 799 páginas. Bibcode:2013Sci...340..799P. PMID 23687020. doi:10.1126/science.340.6134.799  Parâmetro desconhecido |questão= ignorado (ajuda)
  30. Mounier A, Marchal F, Condemi S (março de 2009). «Is Homo heidelbergensis a distinct species? New insight on the Mauer mandible». Journal of Human Evolution. 56 (3): 219–246. PMID 19249816. doi:10.1016/j.jhevol.2008.12.006 
  31. Cartmill M, Smith FH (2009). The Human Lineage. [S.l.]: John Wiley & Sons. ISBN 978-0471214915. Consultado em 21 de abril de 2013 
  32. a b Meyer M, Fu Q, Aximu-Petri A, Glocke I, Nickel B, Arsuaga JL, et al. (janeiro de 2014). «A mitochondrial genome sequence of a hominin from Sima de los Huesos» (PDF). Nature. 505 (7483): 403–406. Bibcode:2014Natur.505..403M. PMID 24305051. doi:10.1038/nature12788. Arquivado do original (PDF) em 12 de fevereiro de 2014 
  33. Zimmer C. «Bringing Extinct Species Back To Life». National Geographic. Consultado em 26 de março de 2014. Arquivado do original em 12 de dezembro de 2016 
  34. Gray R (31 de janeiro de 2009). «Extinct ibex is resurrected by cloning». Telegraph. Consultado em 9 de abril de 2014. Arquivado do original em 2 de agosto de 2009 
  35. Church G. «Multiplex Automated Genomic Engineering (MAGE): A machine that speeds up evolution is revolutionizing genome design». Wyss Institute. Consultado em 26 de março de 2014. Arquivado do original em 12 de outubro de 2016 
  36. a b The Editors (14 de maio de 2013). «Why Efforts to Bring Extinct Species Back from the Dead Miss the Point». Scientific American. Consultado em 9 de abril de 2014 
  37. Pimm SL, Russell GJ, Gittleman JL, Brooks TM (julho de 1995). «The future of biodiversity». Science. 269 (5222): 347–350. Bibcode:1995Sci...269..347P. PMID 17841251. doi:10.1126/science.269.5222.347 
  38. Hogan M. «Causes of Extinction». The Encyclopedia of Earth. Consultado em 9 de abril de 2014 
  39. Church G (20 de agosto de 2013). «De-Extinction Is a Good Idea». Scientific American. Consultado em 9 de abril de 2014 
  40. «Method: Principles». Amino Acid Geochronology Laboratory. Northern Arizona University. Consultado em 26 de março de 2014. Arquivado do original em 14 de março de 2012 
  41. a b c Poinar HN, Höss M, Bada JL, Pääbo S (maio de 1996). «Amino acid racemization and the preservation of ancient DNA». Science. 272 (5263): 864–866. Bibcode:1996Sci...272..864P. PMID 8629020. doi:10.1126/science.272.5263.864. hdl:2060/19980202342  
  42. Henn BM, Gignoux CR, Feldman MW, Mountain JL (janeiro de 2009). «Characterizing the time dependency of human mitochondrial DNA mutation rate estimates». Molecular Biology and Evolution. 26 (1): 217–230. PMID 18984905. doi:10.1093/molbev/msn244  
  43. «Mitochondrial DNA». DNA Analyst Training. NFSTC Science Serving Justice. Consultado em 23 de abril de 2014. Arquivado do original em 1 de fevereiro de 2014 
  44. Lang BF, Gray MW, Burger G (1999). «Mitochondrial genome evolution and the origin of eukaryotes». Annual Review of Genetics. 33: 351–397. PMID 10690412. doi:10.1146/annurev.genet.33.1.351 
  45. a b c d e f g Hodges SB, Schweitzer MH. Molecular Paleontology (PDF). [S.l.]: Encyclopedia of Paleontology. pp. 752–754 
  46. a b Cano RJ, Poinar HN (setembro de 1993). «Rapid isolation of DNA from fossil and museum specimens suitable for PCR». BioTechniques. 15 (3): 432–4, 436. PMID 8217155 
  47. a b Tagliavia M, Massa B, Albanese I, La Farina M (29 de março de 2011). «DNA Extraction From Orthoptera Museum Specimens» (PDF). Analytical Letters. 44 (6): 1058–1062. doi:10.1080/00032719.2010.506939. hdl:10447/57711  
  48. a b Tuross N (junho de 1994). «The biochemistry of ancient DNA in bone». Experientia. 50 (6): 530–535. PMID 7517371. doi:10.1007/bf01921721 
  49. Tuross N, Stathoplos L (1993). «[9] Ancient proteins in fossil bones». Ancient proteins in fossil bones. Methods in Enzymology. 224. [S.l.: s.n.] pp. 121–129. ISBN 9780121821258. PMID 8264383. doi:10.1016/0076-6879(93)24010-r 

Ver também editar